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1,25-二羟维生素D3对大鼠肾间质纤维化的作用研究-医学论文

作者:荣智利,张旭,张翠微,高岑,江燕,马跃荣来源:《中国医药导报》日期:2012-08-08人气:690
肾间质纤维化(renalinterstitialfibrosis,RIF)是一个多步骤、连续的动态过程,是各种慢性肾脏疾病发展至终末期的共同通路和主要病理改变[1],其变化的程度和范围决定了肾功能的恶化程度[2-4]。单侧输尿管梗阻(unilateralureteralobstruction,UUO)大鼠是一种经典的RIF动物模型,既可短期内致使肾间质纤维化,模拟慢性肾病时肾间质的病理表现,又可使病变局限在肾小管和肾间质,不引起肾小球及其他组织的损伤[5]。近期研究显示,1,25-二羟维生素D3〔1,25-dihydroxyvitaminD3,1,25-(OH)2D3〕主要通过与其特异性受体结合发挥经典的骨盐调节作用,并参与免疫调节、调控激素分泌和细胞有丝分裂、抑制细胞增殖、分化及凋亡等过程[6]。1,25-(OH)2D3受体可选择性表达于肾脏的近曲小管、远曲小管、集合管和髓袢升支[7],但其是否在RIF形成过程中发挥作用不详。本研究利用1,25-(OH)2D3干预UUO大鼠,观察其对RIF形成有无影响,以探讨其在RIF过程中的作用。

1仪器与试药

  1.1实验动物

  雄性SD大鼠,45只,8周龄,体重(200±20)g,购自泸州医学院医学实验动物中心。

  1.2药物和主要试剂

  1,25-(OH)2D3(Roche公司,美国),兔抗大鼠α-SMA多克隆抗体(SantaCruz公司,美国),尿蛋白双缩脲试剂盒(Amresco公司,美国)。

 2方法与结果

  2.1实验方法

  2.1.1实验动物分组及处置45只SD大鼠随机均分为假手术组、UUO组和1,25-(OH)2D3干预组,每组各15只。采用单侧输尿管结扎建立UUO大鼠模型[8]。1%戊巴比妥钠腹腔注射麻醉后,局部剃毛和常规消毒铺巾,选腹正中切口依次切开皮肤至腹腔,游离肾脏及输尿管,分别在左侧输尿管近肾盂处和输尿管上1/3处用1-0丝线两次结扎,剪断输尿管,然后逐层连续缝合皮肤。假手术组进入腹腔后仅游离肾脏和输尿管而不结扎离断,余手术方式与UUO组相同。干预组于术后第1天起每天腹腔注射30ng/(kg·d)的1,25-(OH)2D3[9],假手术组及UUO组每天腹腔注射等量生理盐水。分别于术后第3、7和14天处死大鼠,每次5只,取梗阻侧肾脏测量其大小及形态,固定包埋后,制片行HE、Masson和α-SMA染色;开胸经心脏取血检测肌酐和尿素氮水平;各组大鼠于处死前1天收集24h尿液,检测尿蛋白含量。

  2.1.2肾脏病理检查每张HE、Masson和α-SMA切片随机选取10个不重复视野(×200,HPF),组内求和取其平均值作为每组最终数据。①HE染色判定肾间质损伤及纤维化程度:HE切片依据Radford[10]标准设定8个参数指标(肾小管扩张、小管萎缩、小管上皮细胞空泡变性、间质水肿、间质炎细胞浸润、间质纤维化程度、红细胞管型、蛋白管型),每个参数按0~3分评定(0分,正常;1分,轻度受损,病变范围<15%;2分,中度受损,病变范围15%~50%;3分,重度受损,病变范围>50%),由两个观察者盲法评分取其平均值,每个样本的评分为0~24分。②Masson染色判定纤维化程度:Masson染色是用于显示组织中纤维的一种染色方法,染色切片中胶原纤维呈绿色,肌肉、纤维素和红细胞均呈红色,细胞核呈蓝色,正常肾组织中仅肾小管基底膜染成绿色。RIF进程中胶原纤维逐步取代正常肾单位,肾实质萎缩减少。本实验通过对胶原纤维染色,运用ImageProPlus6.0图像分析软件计算镜下绿染面积占整个视野的百分比,以了解受损肾脏的纤维化程度。③α-SMA免疫组化染色:在本实验中α-SMA用于标记肌成纤维细胞(myofibroblast,MFB),其阳性信号为细胞胞浆呈现棕黄色颗粒。运用ImageProPlus6.0图像分析软件计算染色阳性细胞的积分光密度值(指将阳性细胞内染色量化为综合面积和灰度值所得到的结果,其值越大,提示抗原表达水平越高,反之亦然)。

2.1.3肾功能检测采血后3000r/min离心分离血清,于日本7180型全自动生化分析仪上检测血肌酐、尿素氮水平(此血生化检查由泸州医学院附属医院检验科协助完成);根据尿蛋白双缩脲试剂盒的操作说明,检测24h尿蛋白含量。

  2.1.4统计学方法

  用SPSS17.0统计软件进行统计学处理,所有数据采用均数±标准差(x±s)表示,多组间计量资料比较用单因素方差分析(One-wayANOVAtest),两两比较采用Dunnett-t检验。以P<0.05为差异有统计学意义。

  2.2肾脏病理学改变结果

  2.2.1肉眼病理改变假手术组患侧肾脏大小形态正常;UUO组和干预组梗阻侧肾脏均明显肿大,颜色变浅,表面张力增加,有尿液潴留,切面肾实质变薄,肾盂肾盏扩张,皮髓质分界不清,肾乳头缺血萎缩,并随着时间的延长而加重,以UUO组病变更为明显。

 2.2.2光镜下病理改变①HE切片假手术组各时间点肾组织无明显改变。UUO组术后第3天肾小管轻度少量扩张,上皮细胞浊肿变性,肾间质轻度水肿,伴炎细胞局灶性浸润;术后第7天,肾小管进一步扩张,以皮髓交界处尤为明显,上皮细胞空泡变性,管腔内见细胞或蛋白,伴炎细胞弥漫性浸润和部分小管间质轻度纤维化;术后第14天,皮髓质变薄,小管扩张明显,甚至扩张呈囊性,部分管腔塌陷,上皮细胞空泡变性显著,出现大量坏死,间质内巨噬细胞、淋巴细胞弥漫性浸润和成纤维细胞增生及胶原形成,纤维化明显,各时间点肾间质评分差异明显,有统计学意义(P<0.05)。②Masson切片显示假手术组绿染区域主要位于小管基底膜及其周围,小管间质几乎无染色。术后第3天,UUO组皮髓交界区出现轻度纤维化,并随着梗阻时间的延长绿染面积扩大,表现为肾间质进行性增宽,胶原纤维增加,染色加深,各时间点绿染面积所占百分比比较,差异有统计学意义(P<0.05)。③假手术组α-SMA仅表达于血管平滑肌细胞,肾小球、肾小管及间质均未见表达。UUO组术后第3天可见肾间质内α-SMA少量表达;术后第7天肾小管上皮细胞出现阳性表达,皮髓交界处出现轻微纤维化;术后第14天表达达到高峰,皮质区和皮髓交界区明显,各时间点α-SMA的累积光密度值(IOD)比较,差异具有统计学意义(P<0.05)。④干预组与假手术组相比,各时间点各项指标明显增高;而较之UUO组,各时间点各项指标明显改善,其肾损伤、间质纤维化程度及α-SMA阳性率明显改善,差异有统计学意义(P<0.05)。见表1、图1。

  表1各组大鼠不同时间点光镜下病理改变(x±s,n=5)

  注:与假手术组比较,aP<0.05;与UUO组比较,bP<0.05;与第3天比较,cP<0.05;与第7天比较,dP<0.05

  2.3各组肾功能比较结果

  与假手术组相比,术后第3、7和14天UUO组与干预组肌酐、尿素氮及24h尿蛋白含量均明显高于假手术组,差异有统计学意义(均P<0.05),其中第3、7天各指标呈现上升趋势,第14天时表现为下降;与UUO组相比,干预组各时间点各项指标明显改善,差异均有统计学意义(均P<0.05);而假手术组术后各时间点各项指标差异不明显,差异无统计学意义(P>0.05)。见表2。

  3讨论

  RIF发生机制错综复杂,可概括为细胞外基质增多、肾小管上皮细胞转分化(epithelialtmesenchymaltransition,EMT)和多种细胞因子及血管活性物质的激活与相互作用。近年研究表明,MFB的激活是RIF形成的关键[11],而其中1/3的MFB由EMT而来[12],这种EMT的细胞过度增殖,可分泌多种细胞因子致使细胞外基质合成与降解失衡,最终导致RIF的发生。RIF的病理过程是由病变初期的炎症细胞浸润,继而EMT发生和肾间质成纤维细胞活化增殖,共同产生大量细胞外基质并发生沉积,最后肾小管萎缩消失,小管间质纤维化[4]。正常成熟的肾小管上皮细胞表达角蛋白,肾间质细胞表达波形蛋白,均无α-SMA的表达;而MFB是成纤维细胞的活化形式,胞浆内含肌动蛋白,可表达α-SMA。MFB广泛存在于纤维化肾组织中,因此α-SMA作为MFB的重要标志,可指示RIF的病理进程[13]。而RIF又与肾功能关系密切,可作为准确预测肾功能恶化程度的指标[3]。UUO模型是目前研究RIF最常用的较成熟模型,具有无高血压、蛋白尿、血脂异常及毒性损害等特点,适合RIF病理机制和防治的研究[5]。1,25-(OH)2D3主要通过与其受体结合发挥其多样生物学作用,如参与维持钙磷平衡;与其他转录因子相互作用,影响基因转录;与其他激素、生长因子及细胞因子等相互作用,参与联系多个信号传导途径,从而发挥复杂而精细的调节作用。有研究表明,肾功能降低与血清中1,25-(OH)2D3的减少呈正比关系[14]。这就说明1,25-(OH)2D3可通过某些途径对肾功能起保护作用,减缓肾脏的病理改变。

本实验结果显示,随着时间延长,UUO组肾间质损伤和纤维化程度逐渐加重,α-SMA标记阳性的MFB逐渐增多;至术后第14天,肾间质纤维化明显,α-SMA表达达到高峰。而肌酐、尿素氮和24h尿蛋白水平于术后第3、7天与梗阻侧肾脏损伤相平行,各项指标明显升高;至第14天,各项指标明显改善,这可能与实验所取血液为全身血液,而此时健侧肾脏发挥了全面代偿作用有关。干预组与UUO组各时间点相比,干预组各项指标改善明显。另有体外实验证明,1,25-(OH)2D3能抑制转化生长因子-β1(tranforminggrowthfactor-β1,TGF-β1)诱发的α-SMA表达,并呈剂量依从关系[15]。TGF-β1是目前已知最强烈的促纤维化因子,可诱导EMT和成纤维细胞活化;而1,25-(OH)2D3的体内信号传导途径与TGF-β1存在有广泛交互的作用[16]。1,25-(OH)2D3在RIF中发挥保护作用的可能机制是通过拮抗TGF-β1诱导的EMT和减少蛋白尿而实现的。

  RIF是一个多因子参与、多路径调控的复杂病理过程,其机制还有待进一步的研究。本研究对1,25-(OH)2D3在RIF中所起的干预作用作了初步探讨,为进一步研究RIF发病机制及寻找治疗方法提供了一定证据和思路。

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